2.2. Solution preparation2.2.1. Cur

2.2. Solution preparation2.2.1. Curcumin–zein solution1.7 g zein was added to 100.0 ml 85% (v/v) aqueous ethanolsolution with magnetic stirring at 500 rpm (IKA R05) for 1 h, thencurcumin powder was added and the mixture was stirred continuouslyfor another hour.2.2.2. Pectin solutionPectin powder was dispersed in double distilled water at aconcentration of 0.1% (w/v), and stirred for 3 h, then filteredthrough filter paper (Fisher Science, P5) to remove any insolublecomponents.2.3. Preparation of curcumin loaded zein–pectin nanoparticles5.88 ml of curcumin–zein ethanol solution was rapidly droppedinto 25.00 ml of pH 4.0 adjusted water using a syringe with constantstirring at 900 rpm (IKA R05, USA). The resulting dispersionwas then stirred for another 5 min, and then the ethanol wasevaporated using a rotary evaporator (Rotavapor R110, BüchiCrop., Switzerland). Water (adjusted to pH 4.0) was added to compensatefor the lost ethanol, so that the final volume of the dispersionwas 25.00 ml. The dispersion was then filtered and pouredinto a 31.25 ml pectin solution with continuous stirring at600 rpm for 30 min.2.4. Nanoparticle characterization2.4.1. Particle size and zeta potential measurementsThe particle size distribution of the colloidal dispersions formedwas measured by dynamic light scattering (DLS), Nano-ZS (MalvernInstruments, Worcestershire, UK). The Z-average diameter andpolydispersity index (PDI) were calculated from the light scatteringmeasurements. The electrical characteristics (f-potential) of the particles in the colloidal dispersions were determined using amicro-electrophoresis device (Nano-ZS, Malvern Instruments,Worcestershire, UK). Samples were diluted with water (adjustedto pH 4.0) prior to measurements to avoid multiple scatteringeffects.2.4.2. Particle yield and curcumin loading efficiency (LE)Freshly prepared colloidal dispersions were centrifuged at3000 rpm for 10 min (Sorvall RC-6 Plus, Thermo ElectronCorporation, USA) to separate any large particles, and then thenanoparticles in the serum phase were freeze dried and weighed,and the curcumin content in the dried nanoparticles was determined.The particle yield and the curcumin loading efficiency werecalculated as follows:Particle yield ð%Þ ¼the weight of the freeze dried particlestotal weight of curcumin; zein and pectin 100%ð1ÞLoading efficiency ð%Þ ¼curcumin in nanoparticlestotal curcumin input 100% ð2Þ2.4.3. Curcumin loading determination10 mg of freeze-dried nanoparticles were solubilized in 10 mlDMSO and then stirred overnight in the dark. The resultingsolution was then centrifuged at 15,000 rpm for 30 min. Thesupernatant was diluted 10 times with DMSO, and the absorbanceat k435 nm was measured using a UV-spectrophotometer(Ultrospec 3000 Pro, Biochrom Ltd, England) to determine thecurcumin concentration on the basis of a calibration curve whichwas previously established using standard solutions (0–10 lg/mlfree curcumin in DMSO).

2.2. Solution preparation2.2.1. Curcumin–zein solution1.7 g zein was added to 100.0 ml 85% (v/v) aqueous ethanolsolution with magnetic stirring at 500 rpm (IKA R05) for 1 h, thencurcumin powder was added and the mixture was stirred continuouslyfor another hour.2.2.2. Pectin solutionPectin powder was dispersed in double distilled water at aconcentration of 0.1% (w/v), and stirred for 3 h, then filteredthrough filter paper (Fisher Science, P5) to remove any insolublecomponents.2.3. Preparation of curcumin loaded zein–pectin nanoparticles5.88 ml of curcumin–zein ethanol solution was rapidly droppedinto 25.00 ml of pH 4.0 adjusted water using a syringe with constantstirring at 900 rpm (IKA R05, USA). The resulting dispersionwas then stirred for another 5 min, and then the ethanol wasevaporated using a rotary evaporator (Rotavapor R110, BüchiCrop., Switzerland). Water (adjusted to pH 4.0) was added to compensatefor the lost ethanol, so that the final volume of the dispersionwas 25.00 ml. The dispersion was then filtered and pouredinto a 31.25 ml pectin solution with continuous stirring at600 rpm for 30 min.2.4. Nanoparticle characterization2.4.1. Particle size and zeta potential measurementsThe particle size distribution of the colloidal dispersions formedwas measured by dynamic light scattering (DLS), Nano-ZS (MalvernInstruments, Worcestershire, UK). The Z-average diameter andpolydispersity index (PDI) were calculated from the light scatteringmeasurements. The electrical characteristics (f-potential) of the particles in the colloidal dispersions were determined using amicro-electrophoresis device (Nano-ZS, Malvern Instruments,Worcestershire, UK). Samples were diluted with water (adjustedto pH 4.0) prior to measurements to avoid multiple scatteringeffects.2.4.2. Particle yield and curcumin loading efficiency (LE)Freshly prepared colloidal dispersions were centrifuged at3000 rpm for 10 min (Sorvall RC-6 Plus, Thermo ElectronCorporation, USA) to separate any large particles, and then thenanoparticles in the serum phase were freeze dried and weighed,and the curcumin content in the dried nanoparticles was determined.The particle yield and the curcumin loading efficiency werecalculated as follows:Particle yield ð%Þ ¼the weight of the freeze dried particlestotal weight of curcumin; zein and pectin  100%ð1ÞLoading efficiency ð%Þ ¼curcumin in nanoparticlestotal curcumin input 100% ð2Þ2.4.3. Curcumin loading determination10 mg of freeze-dried nanoparticles were solubilized in 10 mlDMSO and then stirred overnight in the dark. The resultingsolution was then centrifuged at 15,000 rpm for 30 min. Thesupernatant was diluted 10 times with DMSO, and the absorbanceat k435 nm was measured using a UV-spectrophotometer(Ultrospec 3000 Pro, Biochrom Ltd, England) to determine thecurcumin concentration on the basis of a calibration curve whichwas previously established using standard solutions (0–10 lg/mlfree curcumin in DMSO).

0/5000

原始語言: -

目標語言: -

結果 (繁體中文) 1: [復制]

復制成功！

2.2。溶液配製 2.2.1。薑黃素玉米醇溶蛋白溶液 1.7克玉米蛋白加入到100.0毫升85％（V / V）乙醇水溶液 以500rpm（IKA R05）處理1小時磁力攪拌溶液中，然後 加入薑黃素粉末，並將混合物連續攪拌 另外一小時。 2.2.2。果膠溶液 果膠粉末在分散在雙蒸水中 的0.1％濃度（重量/體積），並攪拌3小時，然後過濾 通過濾紙（費舍爾科學，P5），以除去任何不溶性 組分。 2.3。薑黃素的製備負載的玉米醇溶蛋白，果膠納米顆粒 5.88毫升薑黃素玉米醇溶蛋白乙醇溶液迅速下降 使用具有恆定注射器向25.00毫升pH4.0的調節水的 以900rpm（IKA R05，USA）進行攪拌。將所得的分散體 然後再攪拌5分鐘，然後將乙醇 使用旋轉蒸發器蒸發（旋轉蒸發器R110，步琪 作物。，瑞士）。加入水（調節至pH 4.0），以補償 該丟失的乙醇，從而使分散體的最終體積 25.00毫升然後將分散體過濾並傾 入連續攪拌下在一31.25毫升果膠溶液 600rpm下30分鐘。 2.4。納米顆粒表徵 2.4.1。顆粒尺寸和ζ電勢測量 所形成的膠態分散體的粒度分佈 通過動態光散射（DLS），納米ZS測量（馬爾文 儀器儀表，伍斯特郡，英國）。Z均直徑和 多分散性指數（PDI）分別從光散射計算 測量。在膠態分散體中的顆粒的電特性（F-電位）使用所確定的 微電泳設備（納米ZS，馬爾文儀器， 伍斯特郡，UK）。將樣品用水（調整稀釋 之前測量到pH 4.0），以避免多重散射 的效果。 2.4.2。顆粒產量和薑黃素負載效率（LE） 新鮮製備的膠態分散體在離心 3000rpm進行10分鐘離心（Sorvall？RC-6另外，熱電 公司，美國）以分離任何大的顆粒，然後將 在血清相納米顆粒的冷凍乾燥並稱重， 並在乾燥的納米顆粒中的薑黃素的含量進行了測定。 顆粒產量和薑黃素裝載效率被 計算如下： 粒子產率d％Þ¼ 冷凍乾燥的顆粒的重量 的薑黃素的總重量; 玉米醇溶蛋白和果膠？100％ ð1Þ 加載效率d％Þ¼ 薑黃素納米顆粒 總薑黃素輸入？100％ð2Þ 2.4.3。薑黃素負載確定 為10mg冷凍乾燥的納米顆粒在10毫升溶解 DMSO中，然後在黑暗中攪拌過夜。將所得 然後溶液在15,000rpm離心30分鐘。該 上清液稀釋10倍，DMSO，和吸光度 使用UV分光光度計測量在K435納米 （Ultrospec？3000專業版，Biochrom有限公司，英國），以確定 其中的校準曲線的基礎上薑黃素濃度 先前使用標準建立解決方案（0-10克/毫升 DMSO中游離薑黃素）。

正在翻譯中..

結果 (繁體中文) 2:[復制]

復制成功！

2.2. 解決方案準備 2.2.1. 薑黃素-澤因溶液 1.7 g zein 被添加到 100.0 ml 85% （v/v）水乙醇中 在 500 rpm （IKA R05）下進行磁性攪拌的解決方案，持續 1 小時，然後 加入薑黃素粉，並連續攪拌混合物 再過一個小時 2.2.2. 果膠溶液 果膠粉被分散在雙蒸餾水中 濃度為0.1%（w/v），攪拌3小時，然後過濾 通過濾紙（費舍爾科學，P5）去除任何不溶性 元件。 2.3. 薑黃素載入的Zein_果膠納米顆粒的製備 5.88ml薑黃素-津因乙醇溶液迅速下降 使用具有恆定的注射器，將 pH 4.0 調節水放入 25.00 ml 在 900 rpm 轉速下攪拌（美國 IKA R05）。產生的色散 然後攪拌了5分鐘，然後乙醇 使用旋轉蒸發器蒸發（Rotavapor R110，貝奇 作物，瑞士）。水（調整到pH 4.0）被添加以補償 對於丟失的乙醇，使分散的最終體積 是25.00毫升然後過濾和澆注分散 進入31.25ml果膠溶液中，在 600 rpm，30 分鐘 2.4. 納米粒子表徵 2.4.1. 粒子大小和齊塔電位測量 形成膠體分散體的粒徑分佈 通過動態光散射（DLS）、納米 ZS（瑪律文）進行測量 儀器，英國烏斯特郡）。Z 平均直徑和 多分散度指數（PDI）是根據光散射計算的 測量。膠體分散體中顆粒的電氣特性（f-電位）是使用 微電泳裝置（納米ZS，瑪律文儀器， 英國烏斯特郡）。樣品用水稀釋（調整後） 在測量之前，避免多次散射，以pH 4.0） 影響。 2.4.2. 顆粒產量和薑黃素載入效率（LE） 新鮮製備的膠體分散體在 3000 rpm 10 分鐘（索瓦爾 RC-6 Plus，熱電子 公司，美國）分離任何大顆粒，然後 血清階段的納米粒子被冷凍乾燥和稱重， 測定了幹納米顆粒中的薑黃素含量。 顆粒產量和薑黃素載入效率 計算如下： 粒子收率 =%= 1/4 冷凍乾燥顆粒的重量 薑黃素的總重量;zein 和果膠 100% [1] 裝載效率 =%= 1/4 納米顆粒中的薑黃素 總薑黃素輸入 100% [2] 2.4.3. 薑黃素載入測定 10毫克凍幹納米顆粒在10毫升中溶解 DMSO，然後在黑暗中攪拌過夜。結果 然後，在15，000rpm轉速下對溶液進行30分鐘的離心。的 上清液被稀釋10倍與DMSO，和吸收 在 k435 nm 使用紫外分光度計進行測量 （Ultrospec 3000 Pro，英國生物鉻有限公司）確定 薑黃素濃度的基礎上校準曲線 以前使用標準溶液（0⁄10 lg/ml）建立 DMSO 中的游免費薑黃素）。

正在翻譯中..

結果 (繁體中文) 3:[復制]

復制成功！

2.2條。溶液製備 2.2.1條。薑黃素-玉米醇溶蛋白溶液 將1.7 g玉米醇溶蛋白添加到100.0 ml 85%（v/v）水乙醇中 溶液在500轉/分（IKA R05）下磁力攪拌1小時，然後 加入薑黃素粉末並連續攪拌混合物 再過一個小時。 2.2.2條。果膠溶液 果膠粉分散在雙蒸餾水中 濃度0.1%（w/v），攪拌3h，過濾 通過濾紙（Fisher Science，P5）去除任何不溶物 組件。 2.3條。薑黃素-果膠納米粒的製備 迅速滴下5.88毫升薑黃素-玉米醇溶液 使用恒定注射器注入25.00毫升pH值為4.0的調節水 以900轉/分攪拌（IKA R05，美國）。由此產生的色散 然後再攪拌5分鐘，然後乙醇 使用旋轉蒸發器蒸發（Rotavapor R110，Büchi 瑞士農作物）。添加水（調整至pH 4.0）以補償 對於失去的乙醇，使最終體積的分散 為25.00毫升。然後過濾並倒入分散液 在31.25毫升果膠溶液中持續攪拌 600轉/分，持續30分鐘。 2.4條。納米粒子表徵 2.4.1條。粒徑和zeta電位量測 膠體分散體的粒徑分佈 用動態光散射（DLS）、納米ZS（Malvern）量測 儀器，烏斯特郡，英國）。Z平均直徑和 從光散射計算出多分散指數（PDI） 量測。在膠體分散體中，粒子的電特性（f-電位）用 微電泳裝置（納米ZS，瑪律文儀器， 英國烏斯特郡）。用水稀釋樣品（調整 pH4.0）量測前，避免多次散射 影響。 2.4.2條。顆粒產率與薑黃素負載效率（LE） 新製備的膠體分散體在 3000轉/分，持續10分鐘（Sorvall RC-6 Plus，熱電 （美國）分離任何大顆粒，然後 血清中的納米粒冷凍乾燥並稱重， 並測定了幹制的納米顆粒中薑黃素的含量。 顆粒產率和薑黃素負載效率分別為 計算如下： 顆粒產率ð%Þ四分之一 凍幹顆粒的重量 薑黃素、玉米醇溶蛋白、果膠總重量100% ð1Þ 加載效率 薑黃素納米粒 總薑黃素輸入量100% 2.4.3條。薑黃素負載量測定 10mg凍幹納米粒溶於10ml中 然後在黑暗中攪拌一夜。結果 然後將溶液以15000轉/分離心30分鐘 上清液用二甲基亞碸稀釋10倍，吸光度 在k435 nm處用紫外分光光度計量測 （Ultrospec 3000 Pro，Biochrom有限公司，英國）確定 基於校準曲線的薑黃素濃度 以前使用標準溶液（0–10 lg/ml 二甲基亞碸中的游離薑黃素）。

正在翻譯中..

其它語言

本翻譯工具支援: 世界語, 中文, 丹麥文, 亞塞拜然文, 亞美尼亞文, 伊博文, 俄文, 保加利亞文, 信德文, 偵測語言, 優魯巴文, 克林貢語, 克羅埃西亞文, 冰島文, 加泰羅尼亞文, 加里西亞文, 匈牙利文, 南非柯薩文, 南非祖魯文, 卡納達文, 印尼巽他文, 印尼文, 印度古哈拉地文, 印度文, 吉爾吉斯文, 哈薩克文, 喬治亞文, 土庫曼文, 土耳其文, 塔吉克文, 塞爾維亞文, 夏威夷文, 奇切瓦文, 威爾斯文, 孟加拉文, 宿霧文, 寮文, 尼泊爾文, 巴斯克文, 布爾文, 希伯來文, 希臘文, 帕施圖文, 庫德文, 弗利然文, 德文, 意第緒文, 愛沙尼亞文, 愛爾蘭文, 拉丁文, 拉脫維亞文, 挪威文, 捷克文, 斯洛伐克文, 斯洛維尼亞文, 斯瓦希里文, 旁遮普文, 日文, 歐利亞文 (奧里雅文), 毛利文, 法文, 波士尼亞文, 波斯文, 波蘭文, 泰文, 泰盧固文, 泰米爾文, 海地克里奧文, 烏克蘭文, 烏爾都文, 烏茲別克文, 爪哇文, 瑞典文, 瑟索托文, 白俄羅斯文, 盧安達文, 盧森堡文, 科西嘉文, 立陶宛文, 索馬里文, 紹納文, 維吾爾文, 緬甸文, 繁體中文, 羅馬尼亞文, 義大利文, 芬蘭文, 苗文, 英文, 荷蘭文, 菲律賓文, 葡萄牙文, 蒙古文, 薩摩亞文, 蘇格蘭的蓋爾文, 西班牙文, 豪沙文, 越南文, 錫蘭文, 阿姆哈拉文, 阿拉伯文, 阿爾巴尼亞文, 韃靼文, 韓文, 馬來文, 馬其頓文, 馬拉加斯文, 馬拉地文, 馬拉雅拉姆文, 馬耳他文, 高棉文, 等語言的翻譯.